Influência de Trichoderma spp. na promoção de crescimento de Vigna unguiculata

Rewysson Alves Ribeiro da Silva; Luciana Gonçalves de Oliveira; Maria Luiza de Souza Lima; Mayara Goés Kettner; Ana Paula Medeiros dos Santos Rodrigues Mendonça; Antonio Félix da Costa

doi:10.18378/rvads.v17i4.9578

Authors

Rewysson Alves Ribeiro da Silva Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife
Luciana Gonçalves de Oliveira Instituto Agronômico de Pernambuco, Recife
Maria Luiza de Souza Lima Instituto Agronômico de Pernambuco, Recife
Mayara Goés Kettner Universidade Federal de Pernambuco, Recife
Ana Paula Medeiros dos Santos Rodrigues Mendonça Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife
Antonio Félix da Costa Instituto Agronômico de Pernambuco, Recife

DOI:

https://doi.org/10.18378/rvads.v17i4.9578

Keywords:

Cowpea, Green dough, Increment

Abstract

The Cowpea (Vigna unguiculata (L.) Walp.) is known as macassar bean and colony bean. In addition to its economic importance, it has high nutritional contents, being a substitute for animal protein. Fungi of the genus Trichoderma are known to be biological controllers and for their versatility. This work aimed to evaluate the effect of Trichoderma spp. on the growth of cowpea plants. Fifteen Trichoderma isolates and one cowpea genotype were used. The bioassay was completely randomized, repeating once. The isolates were multiplied in parboiled rice. From each isolate, a suspension of conidia adjusted to 10⁶ conidia mL^-1 was prepared, each plant receiving 25 mL of the suspension, evaluating 30 days after inoculation, plant height, weight of green mass and dry mass. Ten isolates provided gains in height of the treated plants, differing on average from the control in the two bioassays performed. Plants treated with T 12.11 and T 5.16 had increases in green and dry mass weight in all bioassays and in all analyzed variables. The use of Trichoderma species to promote growth in cowpea represents a viable alternative for farmers. The most promising isolates T 2.24 and T 2.54 from the species T. asperelloides, and T 5.16 and T 12.11 from Trichoderma spp. can be used to increase dry matter in cowpea, requiring studies in order to visualize greater commercial production and to develop more practical forms of inoculation.

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References

AGUIAR, A. R.; MACHADO, D. F. M.; PARANHOS, J. T.; SILVA, A. C. F. Seleção de isolados de Trichoderma spp. na promoção de crescimento de mudas do feijoeiro cv. Carioca e controle de Sclerotinia sclerotiorum. Ciência e Natura, v. 34, n. 2, p. 47-58, 2012. https://doi.org/10.5902/2179460X9341

AMARAL, A. C. T.; MACIEL, M. H. C.; MACHADO, A. R.; OLIVEIRA, L. G. LIMA, C. S.; COSTA, A. F.; OLIVEIRA, N. T. Trichoderma as a biological agent of Fusarium oxysporum species complex and Vigna unguiculata growth promoter. European Journal of Plant Pathology, v. 163, n. 4, p. 875-890, 2022. https://doi.org/10.1007/s10658-022-02526-6.

AMARAL, P. P.; STEFFEN, G. P. K.; MALDANER, J.; MISSIO, E. L.; SALDANHA, C. W. Promotores de crescimento na propagação de caroba. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 37, n. 90, p. 149-157, 2017. https://doi.org/10.4336/2017.pfb.37.90.1402.

BARBOSA, F. R.; GONZAGA, A. C. de O. (Ed.) Informações técnicas para o cultivo do feijoeiro-comum na Região Central-Brasileira: 2012-2014. Santo Antônio do Goiás – GO. Embrapa Arroz e Feijão, 2012. 247 p. (Embrapa Arroz e Feijão. Documentos, 272).

CANTERI, M. G., ALTHAUS, R. A., VIRGENS FILHO, J. S., GIGLIOTI, E. A., GODOY, C. V. SASM - Agri: Sistema para análise e separação de médias em experimentos agrícolas pelos métodos Scoft - Knott, Tukey e Duncan. Revista Brasileira de Agrocomputação, v. 1, n. 2, p. 18-24, 2001.

CARVALHO, D. D. C.; MELLO, S. C. M.; MARTINS, I.; JUNIOR, M. L. Biological control of Fusarium wilt on common beans by in-furrow application of Trichoderma harzianum. Tropical Plant Pathology, v. 40, n. 6, p. 375–381. 2015. https://doi.org/10.1007/s40858-015-0057-1.

CARVALHO, D. D. C.; MELLO, S. C. M.; LOBO JUNIOR, M.; SILVA, M. C. Controle de Fusarium oxysporum f.sp. phaseoli in vitro e em sementes, e promoção do crescimento inicial do feijoeiro comum por Trichoderma harzianum. Tropical Plant Pathology, v. 36, n. 1, p. 28-34, 2011. https://doi.org/10.1590/S1982-56762011000100004

CHAGAS, L. F. B.; CASTRO, H. G.; COLONIA, B. S. O.; CARVALHO FILHO, M. R.; MILLER, L. O.; CHAGAS JÚNIOR, A. F. Efficiency of Trichoderma spp. as a growth promoter of cowpea (Vigna unguiculata) and analysis of phosphate solubilization and indole acetic acid synthesis. Brazilian Journal of Botany, v. 39, p. 437-445, 2015. https://doi.org/10.1007/s40415-015-0247-6.

CHAGAS, L. F. B.; CHAGAS JÚNIOR, A. F.; SOARES, L. P.; FIDELIS, R. R. Trichoderma na promoção do crescimento vegetal. Revista de Agricultura Neotropical, v.4, n 3, p. 97–102, 2017. https://doi.org/10.32404/rean.v4i3.1529.

CHAGAS JÚNIOR, A. F. C.; OLIVEIRA, A. G.; SANTOS, G. R.; REIS, A. F. B.; CHAGAS, L. F. B. Promoção de crescimento em feijão-caupi inoculado com Rizóbio e Trichoderma spp. no Cerrado. Revista Caatinga, v. 27, n. 3, p. 190-199, 2014.

CONAB, Compainha Nacional de Abastecimento. Acompanhamento da Safra Brasileira. Brasília, v.10 – Safra 2022/23, n.1 - Primeiro levantamento, p. 1-77, 2022. Disponível em: <https://www.conab.gov.br/info-agro/safras/graos/boletim-da-safra-de-graos>. Acessado: 10 de Nov 2022.

CONAB, Compainha Nacional de Abastecimento. Acompanhamento da Safra Brasileira. Brasília, v.10 – Safra 2022/23, n.3 - Terceiro levantamento, p. 1-82, 2022. Disponível em: <https://www.conab.gov.br/info-agro/safras/graos/boletim-da-safra-de-graos>. Acessado: 10 de Nov 2022.

CONTRERAS-CORNEJO, H. A.; MACÍAS-RODRÍGUEZ, L.; CORTÉS-PENAGOS, C.; LÓPEZ-BUCIO, J. Trichoderma virens, a plant beneficial fungus, enhances biomass production and promotes lateral root growth through an auxin-dependent mechanism in Arabidopsis. Plant Physiology, v. 149, n. 3, p. 1579–1592, 2009. https://doi.org/10.1104/pp.108.130369.

FURTUNATO, A. A.; MAGALHÃES M. M. A.; MARIA, Z. L. Estudo do feijão verde (Vigna unguiculata (L) Walp) minimamente processado. Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 20, n. 3, p. 299-301, 2000. https://doi.org/10.1590/S0101-20612000000300004.

KHALEDI, N.; TAHERI, P. Biocontrol mechanisms of Trichoderma harzianum against soybean charcoal rot caused by Macrophomina phaseolina. Journal of Pant Protection Research, v. 56, n. 1, 2016. https://doi.org/10.1515/jppr-2016-0004.

MEDINA, L. P. B.; BARROS, M. B. A.; SOUZA, N. F. S.; BASTOS, T. F.; LIMA, M. G.; SZWARCWALD, C. L. Desigualdades sociais no perfil de consumo de alimentos da população brasileira: Pesquisa Nacional de Saúde, 2013. Revista Brasileira de Epidemiologia, 22(supl.2): E190011.SUPL.2, 2019. https://doi.org/10.1590/1980-549720190011.supl.2.

MENEZES, J. P.; LUPATINI, M.; ANTONIOLLI, Z. I.; BLUME, E.; JUNGES, E.; MANZONI, C. G. Variabilidade genética na região ITS do r DNA de isolados de Trichoderma spp. (Biocontrolador) e Fusarium oxysporum f. sp. Chrysanthemi. Ciência e Agrotecnologia, v. 34, n.1, p. 132-139, 2010. https://doi.org/10.1590/S1413-70542010000100017.

MOREIRA, S. S. Aspectos do desenvolvimento em feijão comum (Phaseolus vulgaris L.) inoculados com Trichiderma spp. 2014. Dissertação, Universidade Federal de Goiás. Goiânia, 2014, 85p. Disponível em: < https://repositorio.bc.ufg.br/tede/handle/tede/4019>. Acessado em: 10 Nov 2022.

OLIVEIRA, A. G.; JUNIOR, A. F. C.; SANTOS, G. R.; MILLER, L. O.; CHAGAS, L. F. B. Potencial de solubilização de fosfato e produção de AIA por Trichoderma spp. Revista Verde de Agroecologia e Desenvolvimento Sustentável, v. 7, n. 3, p. 149-155, 2012. https://doi.org/10.18378/rvads.v7i3.1338.

OLIVEIRA, L. L. B.; MORAES, J. G. L.; SILVA, C. F. B.; SOUZA, A. B. O.; BELEZA, N. M. V.; JACINTO JÚNIOR, S. G. Influência da temperatura e radiação ultravioleta no desenvolvimento de isolados de Trichoderma spp. Revista Brasileira de Meteorologia, v. 34, n. 3, p. 423-430, 2019. https://doi.org/10.1590/0102-7786343048.

PEDRO, E. A. S.; HARAKAVA, R.; LUCON, C. M. M.; GUZZO, S. D. Promoção do crescimento do feijoeiro e controle da antracnose por Trichoderma spp. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v. 47, n. 11, p. 1589-1595, 2012. https://doi.org/10.1590/S0100-204X2012001100005.

SARAVANAKUMAR, K.; LI, Y.; YU, C.; WANG, Q.; WANG, M.; SUN, J.; GAO, J.; CHEN, J. Effect of Trichoderma harzianum on maize rhizosphere microbiome and biocontrol of Fusarium Stalk rot. Scientific Reports, v. 7, n. 1, p. 1-13, 2017. https://doi.org/10.1038/s41598-017-01680-w.

SHORESH, M., HARMAN, G. E., MASTOURI, F. Induced systemic resistance and plant responses to fungal biocontrol agents. Annual Review Phytopathology, v. 48, n. 1, p. 21-43, 2010. https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-073009-114450.

SOUZA, J. T., BAILEY, B. A., POMELLA, A. W. V., ERBE, E. F., MURPHY, C. A., BAE, H., HEBBAR, P. K. Colonization of cacao seedlings by Trichoderma stromaticum, a mycoparasite of the witches’ broom pathogen, and its influence on plant growth and resistance. Biological Control, v. 46, n. 1, p. 36-45, 2008. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2008.01.010

SILVA, J. C.; TORRES, D. B.; LUSTOSA, D. C.; FILIPPI, M. C. C.; SILVA, G. B. Rice sheath blight biocontrol and growth promotion by Trichoderma isolates from the Amazon. Amazonian Journal of Agricultural and Environmental Sciences, v. 55, n. 4, p. 243-250, 2012. https://doi.org/10.4322/rca.2012.078.

YI, J.; NJOROGE, D. M.; SILVA, D. N.; KINYANJUI, P. K.; CHRISTIAENS, S.; BI, J.; HENDRICKX, M. E. Detailed analysis of seed coat and colyledon reveals molecular 55 understanding of the hard-to-cook defect of common beans (Phaseolus vulgaris L.). Food Chemistry, v. 210, n. 1, p. 481-490, 2016. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.05.018.